Влияние 20-гидроксиэкдизона на медоносную пчелу в условиях теплового стресса
DOI:
https://doi.org/10.7242/2658-705X/2024.1.4Ключевые слова:
20-гидроксиэкдизон, медоносная пчела, стресс, гипертермия, продолжительность жизниАннотация
С целью выявления потенциальной опасности для медоносной пчелы, используемой на опылении левзеи сафлоровидной, проведено исследование влияния 20-гидроксиэкдизона в концентрации от 10–10 моль/л до 10–7 моль/л в сахарном сиропе на продолжительность жизни и двигательную активность рабочих особей в условиях экстремально высокой температуры (50°C). Добавка в корм 20Е оказывает влияние на продолжительность жизни в условиях гипертермии, вероятно, за счет транспорта воды из медового зобика и ректума в гемолимфу, а также на развитие стресс-реакции. Выявлена не линейная, не монотонная зависимость. Сделано предположение, что при потреблении корма с 2×10 -9 моль/л 20Е происходит активация ферментного окисления 20Е, которая обуславливает снижение титра 20Е в гемолимфе и наблюдаемую смену знака эффекта.
Библиографические ссылки
Тимофеев Н. П., Володин В.В., Фролов Ю.М. Распределение 20–гидроксиэкдизона в структуре биомассы надземной части Rhaponticum carthamoides (Willd.) Iljin в условиях агроценоза (республики Коми)// Растительные ресурсы. – 1998. – т. 34. – № 3. – С. 63–69.
Дайнен Л. Стратегия оценки роли фитоэкдистероидов как детеррентов по отношению к беспозвоночным-фитофагам // Физиология растений. – 1998. – Т. 45. – № 3. – С. 347–359.
Уфимцев К.Г., Ширшова Т.И., Володин В.В. Фитоэкдистероиды как детерренты насекомыхфитофагов: действие растения серпухи венценосной Serratula coronata L. – продуцента экдистероидов, на египетскую хлопковую совку Spodoptera littorali (Lepidoptera: Noctuida)// Успехи современной биологии. – 2009. – Т. 129. – № 3. – С. 1–15.
Пестов С.В., Филиппов Н.И., Уфимцев К.Г., Володин В.В. Взаимоотношения насекомых с интродуцированными растениями (на примере видов рода Serratula) // Биодиагностика состояния природных и природно-техногенных систем: материалы ХII Всерос. науч.-практ. конф. Книга 1. – Киров: ООО «Веси», 2014. – С. 195–198. doi: https://doi.org/10.13140/RG.2.1.3654.0964.
Еремина М.А., Грунтенко Н.Е. Нейроэндокринная стресс-реакция насекомых: история развития концепции// Вавиловский журнал генетики и селекции. – 2017. –Т. 21. – № 7. – С. 825–832. doi: https://doi.org/10.18699/VJ17.302.
Petruccelli E., Lark A., Mrkvicka J.A., Kitamoto T. Significance of DopEcR, a Gprotein coupled dopamine/ecdysteroid receptor, in physiological and behavioral response to stressors// J. Neurogenet. – 2020. – Vol. 34. – № 1. – P. 55–68. doi: https://doi.org/10.1080/01677063.2019.1710144.
Zheng W., Rus F., Hernandez A., Kang P., Goldman W., Silverman N. Dehydration triggers ecdysonemediated recognition-protein priming and elevated anti-bacterial immune responses in Drosophila Malpighian tubule renal cells // Bmc Bio. – 2018. – Vol. 16. – № 60. doi: https://doi.org/10.1186/s12915-018-0532-5.
Zheng W., Ocorr K., Tatar M. Extra-cellular matrix induced by steroids through a G-protein coupled receptor in a Drosophila model of renal fibrosis // bioRxiv. – 2019. – P. 653329. doi: https://doi.org/10.1101/653329.
Dow J.A.T., Simons M., Romero M.F. Drosophila melanogaster: a simple genetic model of kidney structure, function and disease // Nat Rev Nephrol. – 2022. – Vol. 7. – P. 417–434. doi: https://doi.org/10.1038/s41581-022-00561-4.
Салтыкова Е.С., Беньковская Г.В., Николенко Ф.Г. Внутривидовые различия в механизмах формирования защитных процессов у медоносной пчелы Apis mellifera // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. – 2007. – Т. 43. – № 2. – Р. 162–167.
Беньковская Г.В., Салтыкова Е.С., Поскряков А.В., Николенко А.Г. Влияние хитосахаридов на биохимические процессы медоносной пчелы при экстремально высокой и низкой температурах// Агрохимия. – 2002. – Т. 3. – С. 62–66.
Еськов Е.К. Морфофизиологические и этологические эффекты гипер- и гипотермии медоносной пчелы// Успехи современной биологии. – 2014. – Т. 134. – № 6. – С. 588–605.
Еськов Е.К. Экзо- и эндогенная вода в теле медоносной пчелы (Apis mellifera, Hymenoptera, Apidae)// Зоологический журнал. – 2018. – Т. 97. – С. 151–160. doi: https://doi.org/10.7868/S0044513418020046.
Bosua H.J., Nicolson S.W., Archer C.R., Pirk C.W.W. Effects of cage volume and bee density on survival and nutrient intake of honeybees (Apis mellifera L.) under laboratory conditions // Apidologie. – 2018. – Vol. 49. – P. 734–746. doi: https://doi.org/10.1007/s13592-018-0595-x.
Williams G.R., Alaux C., Costa C., Csáki T., Doublet V., Eisenhardt D., Fries I., Kuhn R., McMahon D.P., Medrzycki P., Murray T.E., Natsopoulou M.E., Neumann R., Oliver R., Paxton R.J., Pernal S.F., Shutler D., Tanner G., van der Steen J.J.M., Brodschneider R. Standard methods for maintaining adult Apis mellifera in cages under in vitro laboratory conditions // Journal of Apicultural Research. – 2013. – Vol. 52. – № 1. – P. 1–36. doi: https://doi.org/10.3896/IBRA.1.52.1.04.
Lafont R., Serova M., Didry-Barca B., Raynal S., Guibout L., Dinan L., Veillet S., Latil M., Dioh W., Dilda P. 20-Hydroxyecdysone activates the protective arm of the RAAS via Mas receptor // BioRiv. – 2020. doi: https://doi.org/10.1101/2020.04.08.032607.